A　miniaturized　continuous-flow　polymerase　chain　reaction　(PCR)　microfluidic　chip　system　was　developed　to　perform　DNA　amplification.　This　system　consists　of　a　20-cycle　continuous-flow　PCR　microfluidic　chip,　an　electrical　heating　system　and　a　miniature　air　pressure-vacuum　pump.　The　chip　was　ablated　with　excimer　laser　direct-writing　micromachining　technique　on　a　polymethyl　methacrylate　(PMMA)　sheet.　The　ablated　microchannel　was　inverse　trapezoidal　with　a　depth　of　70　μm,　top　width　of　200　μm　and　bottom　width　of　120　μm.　Its　surface　roughness　Ra　was　1.　42　μm　after　being　treated　with　excimer　laser　polishing.　The　substrate　sheet　ablated　with　the　microchannel　was　bonded　with　other　cover　sheets　using　hot-press　bonding　method　to　form　a　closed　structure.　The　electrical　heating　system　consisted　of　three　groups　of　heating　membranes,　Pt100　sensors,　copper　blocks　and　PID　temperature　digital　controllers.　It　could　provide　three　distinct　maintained　temperature　zones　and　a　uniform　temperature　distribution　in　each　zone.　PCR　amplification　of　a　170　base　pair　(bp)　DNA　fragment　was　carried　out　to　validate　the　system＇s　feasibility.　The　PCR　temperatures　were　set　as　94°C　for　denaturation,　55°C　for　primer　annealing　and　72°C　for　extension.　The　flow　rate　in　the　microchannel　was　40　nL/s　and　the　total　time　for　the　completion　of　a　20-cycle　amplification　of　20　μL　reagent　was　15　min.　©　2008　Higher　Education　Press　and　Springer-Verlag　GmbH.